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PM 小贴士 | 细胞培养的步骤和注意事项

发布时间:2021-03-04 17:16 |  点击次数:

细胞培养(cell culture)是指在体外模拟体内环境(无菌、适宜温度、酸碱度和一定营养条件等),使之生存、生长、繁殖并维持主要结构和功能的一种方法。我们来聊聊细胞培养的那些事儿。

1、细胞复苏

将冻存细胞从液氮中取出后,在 37 ℃ 水浴锅内不断摇动促进其融化。将融化的细胞移入离心管中,加入 37 ℃ 预热的 DMEM 完全培养基中(其中胎牛血清约为 10%),轻轻吹匀,离心,500 g 离心 2 min,弃上清液。

加入 DMEM 完全培养基清洗,弃上清液。加入 DMEM 完全培养基,轻轻吹打混匀,制成细胞悬液,接种于培养皿/瓶中,在含 5% CO2 的细胞培养箱中培养。

 

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2、细胞传代

当细胞密度达到 80%~90%(过早产量不足,过晚细胞状态不佳,1:2 至 1:10 以上的比率传代培养,一般 1:3 至 1:5 细胞一代,即从细胞接种到分离再培养的一段时间,非细胞有丝分裂次数)时,去掉完全培养基,用 1X PBS 清洗 2 次。

加入胰蛋白酶(注意:消化液的量以盖住细胞最好,最佳消化温度是 37℃。显微镜下观察细胞:倒置显微镜下观察消化细胞,若胞质回缩,细胞之间不再连接成片,表明此时细胞消化适度)进行消化,放入细胞培养箱中约 2-3 min。

加入适量 DMEM 完全培养基终止胰蛋白酶消化,转移至离心管后 500 g 离心 2min,弃上清液,再加入 DMEM 完全培养基清洗,弃上清液。

加入 DMEM 完全培养基,轻轻吹打混匀,吸取 10 微升进行计数,然后按照所需细胞量在含 5% CO2 的细胞培养箱继续培养。

 


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3、细胞冻存

当细胞密度达到 80%~90% 时,去掉完全培养基,用 1X PBS 清洗 2 次。加入胰蛋白酶进行消化,放入细胞培养箱中约 2-3 min。加入 DMEM 完全培养基终止胰蛋白酶消化,转移至离心管后 500 g 离心 2 min,弃上清液,再加入 DMEM 完全培养基清洗,弃上清液。加入 1 ml 冻存液(90% 胎牛血清,10% DMSO。 一般来讲血清含量可以在 10%-90% 之间调整,冻存液中加入血清一方面可以为细胞提供营养,另一方面可以在细胞冻存过程中提供非渗透性保护物质,如蔗糖,白蛋白等从而更好地保护细胞),放入冻存管内(管内有 yi 丙醇,以保证温度降低的速度),立即放入 4 ℃ 冰箱中冻存 30 min,然后放入 -20 ℃ 冰箱中冻存 30 min,再置于 -80 ℃ 冰箱内过夜。

第二天放入液氮中,可以保存至少两年,如不放人液氮,可以保存三个月。 

细胞冻存和复苏的原则是:慢冻速融,这样更加有利于保持细胞的活力。冻存细胞不加任何保护剂,会导致细胞内冰晶的产生,从而使细胞产生内源性的机械损伤,引起细胞内环境渗透压,PH,电解质等的改变,进而促使细胞死亡。

 


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冻存管


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4、注意事项

(1)预热培养用液:把已经配制好的装有培养液、PBS 和胰蛋白酶的瓶子放入 37 ℃ 水浴锅内预热;
(2)用 75% 酒精擦拭经过紫外线照射的超净工作台和双手;
(3)正确摆放使用的器械:保证足够的操作空间,不仅便于操作而且减少污染;
(4)点燃酒精灯:注意火焰不能太小;
(5)严格的无菌操作;
(6)贴壁细胞消化适度:消化的时间受消化液的种类、配制时间、加入培养瓶中的量等诸多因素的影响,消化过程中应该注意培养细胞形态的变化,一旦胞质回缩,连接变松散,或有成片浮起的迹象就要立即终止消化;
(7)传代细胞所有的操作尽量靠近酒精灯火焰。每次最好只进行一种细胞的操作,每种细胞使用一套器材。避免交叉感染;
(8)传代细胞瓶口每次打开或者关闭都需要在酒精灯上消毒。

 

悬浮细胞培养瓶

贴壁细胞微载体培养瓶

贴壁细胞滚瓶培养